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不同氮素供给水平对84K杨幼苗碳氮代谢的影响

刘奇峰 李卓蓉 吴江婷 罗志斌

引用本文:
Citation:

不同氮素供给水平对84K杨幼苗碳氮代谢的影响

    通讯作者: 罗志斌, luozbbill@163.com
  • 基金项目:

    树木生长适应环境的分子生理基础 2016YFD0600105

  • 中图分类号: S718.43

Effects of Nitrogen Supply Levels on Carbon and Nitrogen Metabolism of Populus alba×P. glandulosa Seedlings

    Corresponding author: Zhi-bin LUO, luozbbill@163.com
  • CLC number: S718.43

  • 摘要: 目的 解析不同氮素供给水平下杨树幼苗的生长与碳氮代谢特征,对提高木材产量和品质以及科学制定人工林养分管理策略具有重要意义。 方法 分别以高氮、正常氮和低氮供给处理84K杨(Populus alba×P. glandulosa),分析其生长特征与碳氮代谢变化特征。 结果 高氮处理增加了净光合速率、根中的蔗糖含量以及叶中的淀粉含量和生物量,促进84K杨的碳代谢;高氮处理促进了84K杨根中NH4+和NO3-吸收和积累,提高了谷氨酸合成酶的活性,增加了大多数氨基酸含量以及总氮含量,促进了84K杨的氮代谢。低氮处理降低了净光合速率、叶中的大多数可溶性糖含量和淀粉含量,抑制84K杨的碳代谢;低氮处理会降低植物体内NH4+、NO3-含量,降低根中的硝酸还原酶(NR)的活性,降低氨基酸含量以及总氮含量,抑制84K杨的氮代谢。 结论 这些结果表明84K杨中的碳代谢与氮代谢响应环境中的氮素的盈亏变化表现出很高的一致性,即外界环境中氮素充足时,碳代谢随着氮代谢的增加而增加;而外界环境中氮素亏缺时,碳代谢随着氮代谢的降低而降低。
  • 图 1  不同氮素水平对84K杨根和叶中的NH4+、NO3-和NO2-含量的影响

    Figure 1.  Concentrations of NH4+、NO3-and NO2-in the roots (a、c and e) and leaves (b、d and f) of P. alba × P. glandulosa supplied with three levels NH4NO3

    图 2  不同氮素水平对84K杨根和叶中氮代谢相关酶活性的影响

    Figure 2.  Activities of nitratereductase (NR, nmol·h-1·mg-1 protein), nitrite reductase (NiR, mmol·h-1·mg-1protein), glutamine synthetase (GS, h-1·mg-1 protein), glutamate synthase (GOGAT, nk at·g-1 protein), and glutamate dehydrogenase (GDH, nk at·g-1 protein) and in roots (a, c, e, g and i) and leaves (b, d, f, h and j) of P. alba × P. glandulosa supplied with three levels NH4NO3

    图 3  不同氮素水平下84杨的氮素利用效率

    Figure 3.  NUE of P. alba × P. glandulosa supplied with three levels NH4NO3

    图 4  84K杨根和叶的总碳氮含量及碳氮比

    Figure 4.  Concentrations of Carbon, nitrogen and C/N ratio in the roots (a、c and e) and leaves (b、d and f) of P.alba×P.glandulosa supplied with three levels NH4NO3

    表 1  不同氮素水平对84K杨树高、地径和生物量的影响

    Table 1.  Height, diameter, biomass of root, biomass of leaves of Populus alba × P. glandulosa supplied with three levels NH4NO3

    处理
    Treatment
    株高
    Height/cm
    地径
    Diameter /cm
    根生物量
    Biomass of root /g
    叶生物量
    Biomass of leaves /g
    高氮HN 144.9±5.0 c 5.5±0.2 b 1.5±0.2 a 9.5±0.8 c
    正常氮NN 130.6±4.9 b 5.1±0.2 ab 1.6±0.2 a 6.0±0.6 b
    低氮HN 100.2±1.3 a 4.9±0.1 a 2.3±0.1 b 3.9±0.4 a
    P-valve **** * **** ****
    注:*P < 0.05; ****:P < 0.000 1
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    表 2  不同氮素水平下84K杨的光合作用和色素含量

    Table 2.  CO2 assimilation rate (A), stomatal conductance (gs), transpiration rate (E), photosynthetic pigments in the leaves of P. alba × P. glandulosa supplied with three levels NH4NO3

    处理
    Treatment
    净光合速率A/
    (μmol ·m-2·s-1)
    气孔导度gs/
    (mol·m-2·s-1)
    蒸腾速率E/
    (mmol·m-2·s-1)
    叶绿素a Chl a/
    (mg·g-1)
    叶绿素b Chl b/
    (mg·g-1)
    类胡萝卜素Car/
    (mg·g-1 )
    高氮HN 7.6±0.4 b 0.9±0.1 b 3.7±0.1 c 5.6±0.5 b 2.7±0.2 c 2.1±0.2 b
    正常氮NN 6.8±0.5 b 0.5±0.2 a 2.6±0.5 a 4.8±0.5 b 2.1±0.2 b 1.9 ± 0.2 b
    低氮LN 3.7±0.2 a 0.4±0.0 a 3.1±0.1 ab 1.8±0.2 a 0.7±0.1 a 0.9±0.0 a
    P-value **** * * **** **** ***
    注:*P < 0.05; ***:P < 0.001; ****:P < 0.0001
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    表 3  不同氮素水平下84K杨根和叶中可溶性糖和淀粉含量

    Table 3.  Concentrations of soluble sugars and starch in the roots and leaves of P. alba × P. glandulosa supplied with supplied with three levels NH4NO3

    组织
    Tissuse
    处理
    Treatment
    葡萄糖
    Glc/ (ng·mg-1)
    果糖
    Fru/ (ng·mg-1)
    蔗糖
    Suc/ (μg·mg-1)
    半乳糖
    Gal/ (ng·mg-1)
    肌醇
    Ins /(ng·mg-1)
    甘露醇
    Man/ (ng·mg-1)
    总糖
    Sum /(μg·mg-1)
    淀粉
    Starch /(mg·mg-1)
    根Root HN 66.7±0.4b 153.0±2.2a 10.5±0.2c 0.7±0.0a 30.3±1.9c 2.4±0.1a 10.7±0.2b 3.5±0.5a
    NN 54.7±0.7a 173.7±2.6b 3.3±0.1a 1.2±0.0b 22.8±0.7b 259.1±0.9b 3.8±0.1a 5.0±1.0a
    LN 74.8±1.5c 147.6±6.0a 7.8±0.2b 9.7±0.1c 12.1±0.7a 4 942.6±276.7c 13.0±0.4c 7.8±0.5b
    P-value **** ** **** **** **** **** **** **
    叶Leaves HN 631.2±10.5c 914.3±12.8c 23.4±1.1a 253.0±14.7c 1 049.6±9.6c 82.6±1.5b 26.3±1.2a 13.2±0.8a
    NN 416.0±1.0b 585.4±8.0b 28.5±0.4b 166.6±3.2b 805.7±6.9b 87.9±1.7b 30.5±0.4b 11.1±1.8a
    LN 180.7±1.6a 234.4±9.8a 32.0±0.7c 54.0±1.5a 512.6±7.2a 55.2±2.1a 33.1±0.8b 9.8±1.0a
    P-value **** **** *** **** **** **** ** ns
    注:**:P < 0.01; ***:P < 0.001; ****:P < 0.0001;ns:not significant.
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    表 4  84K杨根和叶中的游离氨基酸含量

    Table 4.  Concentrations of free amino acids in the roots and new leaves of P. alba × P. glandulosa supplied with three levels NH4NO3 μg·g-1

    组织
    Tissues
    处理
    Treatment
    丙氨酸
    Ala
    甘氨酸
    Gly
    缬氨酸
    Val
    亮氨酸
    Leu
    异亮氨酸
    Ile
    脯氨酸
    Pro
    甲硫氨酸
    Met
    丝氨酸
    Ser
    苏氨酸
    Thr
    苯丙氨酸
    Phe
    天冬氨酸
    Asp
    半胱氨酸
    Cys
    谷氨酸
    Glu
    天冬酰胺
    Asn
    赖氨酸
    Lys
    精氨酸
    Arg
    组氨酸
    His
    酪氨酸
    Tyr
    总氨基酸
    Sum
    根Root 高氮(HN) 242.5±68.5a 27.7±3.7a 86.6±16.1a 66.9±5.2b 90.9±14.6ab 34.3±6.4b 26.2±3.5b 248.1±51.7ab 157.2±12.2ab 41.8±8.2b 686.5±44.4b 32.7±3.2a 1 253.2±96.0b 33 248.1±2 858.5b 69.0±3.0c 8 668.3±1 353.5c 175.2±15.4b 42.5±5.1a 45 239.1±2 810.8b
    正常氮(NN) 426.9±61.7b 88.1±17.0b 130.7±19.4ab 96.9±21.3c 115.8±17.3b 39.1±5.0b 27.8±4.8b 475.6±102.7b 215.5±50.0b 36.8±7.9b 883.9±96.6b 31.0±4.6a 1 618.1±163.6b 32 677.1±7 907.3b 86.6±5.7b 838.4±142.9b 167.4±23.2b 39.5±0.1a 37 852.6±8 115.8b
    低氮(LN) 246.0±60.6a 27.0±4.6a 66.0±18.9a 48.8±14.8a 49.6±14.2a 16.6±2.4a 11.3±4.2a 164.8±41.3a 53.0±15.7a 18.3±4.2a 171.9±51.3a 26.7±3.8a 475.6±156.1a 2 616.2±1 078.7a 24.7±4.4a 48.5±8.5a 43.8±1.5a 33.0±2.2a 4 141.8±1 421.2a
    P-value ** ** ns *** ns * *** ** * ** **** ns ** ** *** *** ** ns **
    叶Leaves 高氮(HN) 581.6±28.9c 29.2±2.9b 114.1±8.2b 101.2±6.2b 78.5±6.8b 81.9±9.9b 125.7±13.6c 810.5±174.9c 139.9±12.6b 148.7±32.9b 395.7±69.8b 62.8±5.1c 3 099.9±298.8c 6 316.7±1 196.1c 108.0±6.9c 180.4±21.4b 44.3±1.6b 52.2±2.8b 12 499.1±1 303.0c
    正常氮(HN) 396.1±47.8b 22.3±2.5b 69.7±9.2a 56.0±15.5a 49.9±6.3a 61.4±10.9b 62.5±5.0b 584.8±130.2b 104.2±15.7b 82.4±23.0ab 347.9±55.7b 40.3±1.5b 2 330.3±336.3b 2 103.2±394.9b 50.5±10.3b 41.4±0.5a 43.7±1.6ab 45.1±9.3ab 6 537.7±1 024.0b
    低氮(LN) 188.3±5.7a 7.6±1.4a 47.5±11.7a 38.2±9.7a 38.5±10.1a 28.2±0.8a 32.8±0.1a 106.1±10.3a 39.7±6.7a 56.6±2.1a 151.8±17.2a 22.5±1.4a 714.1±174.4a 971.2±695.9a 22.5±2.2a 32.5±0.8a 38.9±1.3a 31.5±0.2a 2 595.2±721.7a
    P-value *** ** ** ** * * *** **** ** ** * *** ** ** *** *** ns ** ***
    注:*:P < 0.05;**:P < 0.01;***:P < 0.001;****:P < 0.000 1;ns:notsignificant.
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  • [1]

    Rennenberg H, Wildhagen H, Ehlting B. Nitrogen nutrition of poplar trees[J]. Plant Biol (Stuttg), 2010, 12(2):275-291.
    [2]

    Studer M H, Demartini J D, Davis M F, et al. Lignin content in natural Populus variants affects sugar release[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2011, 108(15):6300-6305.
    [3]

    Luo Z B, Calfapietra C, Liberloo M, et al. Carbon partitioning to mobile and structural fractions in poplar wood under elevated CO2 (EUROFACE) and N fertilization.[J]. Global Change Biology, 2010, 12(2):272-283.
    [4]

    Luo Z B, Polle A. Wood composition and energy content in a poplar short rotation plantation on fertilized agricultural land in a future CO2 atmosphere.[J]. Global Change Biology, 2009, 15(1):38-47.
    [5]

    Novaes E, Luis O, Drost D R, et al. Quantitative genetic analysis of biomass and wood chemistry of Populus under different nitrogen levels[J]. New Phytologist, 2009, 182(4):878-890.
    [6]

    Luo J, Li H, Liu T, et al. Nitrogen metabolism of two contrasting poplar species during acclimation to limiting nitrogen availability[J]. Journal of Experimental Botany, 2013, 64(14):4207-4224.
    [7]

    Luo J, Zhou J, Li H, et al. Global poplar root and leaf transcriptomes reveal links between growth and stress responses under nitrogen starvation and excess[J]. Tree Physiology, 2015, 35(12):1283.
    [8]

    Lópezbucio J, Cruzramírez A, Herreraestrella L. The role of nutrient availability in regulating root architecture.[J]. Current Opinion in Plant Biology, 2003, 6(3):280-287.
    [9]

    Farrar J, Pollock C, Gallagher J. Sucrose and the integration of metabolism in vascular plants[J]. Plant Science, 2000, 154(1):1-11.
    [10]

    Oliveira I C, Brenner E, Chiu J, et al. Metabolite and light regulation of metabolism in plants:lessons from the study of a single biochemical pathway[J]. Brazilian Journal of Medical & Biological Research, 2001, 34(5):567-575.
    [11] 郭鹏旭, 熊淑萍, 杜少勇, 等.氮素形态对豫麦34地上器官游离氨基酸和籽粒蛋白质含量的影响[J].麦类作物学报, 2010, 30(2):326-329.

    [12]

    Zhi L I, Shi H Z, Liu G S, et al. Changes of Carbon-Nitrogen Metabolism of Flue-Cured Tobacco with Sweet Aroma in South Anhui Under Different Fertilization Rates[J]. Soils, 2010, 42(1):8-13.
    [13] 王迎男.不同氮素供应水平对马铃薯植株碳氮比及块茎形成的影响[D].呼和浩特, 内蒙古农业大学, 2017.

    [14] 孙兴祥, 王健, 周毅, 等.不同氮素水平对菠菜生长和品质的影响[J].南京农业大学学报, 2005, 28(3):126-128.

    [15]

    York L M, Galindocastañeda T, Schussler J R, et al. Evolution of US maize (Zea mays L.) root architectural and anatomical phenes over the past 100 years corresponds to increased tolerance of nitrogen stress[J]. Journal of Experimental Botany, 2015, 66(8):2347-2358.
    [16]

    Zhan A, Lynch J P. Reduced frequency of lateral root branching improves N capture from low-N soils in maize[J]. Journal of Experimental Botany, 2015, 66(7):2055-2065.
    [17]

    Euring D, Löfke C, Teichmann T, et al. Nitrogen fertilization has differential effects on N allocation and lignin in two Populus species with contrasting ecology[J]. Trees, 2012, 26(6):1933-1942.
    [18]

    Cooke J E K, Martin W. Nitrogen storage and seasonal nitrogen cycling in Populus: bridging molecular physiology and ecophysiology[J]. New Phytologist, 2010, 167(1):19-30.
    [19]

    Ke L, Shichang L, Yupeng T, et al. Optimized GC-MS method to simultaneously quantify acetylated aldose, ketose, and alditol for plant tissues based on derivatization in a methyl sulfoxide/1-methylimidazole system[J]. J Agric Food Chem, 2013, 61(17):4011-4018.
    [20]

    Deng C, Deng Y, Wang B, et al. Gas chromatography-mass spectrometry method for determination of phenylalanine and tyrosine in neonatal blood spots[J]. Journal of Chromatography B, 2002, 780(2):407-413.
    [21]

    Li H, Li M, Luo J, et al. N-fertilization has different effects on the growth, carbon and nitrogen physiology, and wood properties of slow-and fast-growing Populus species[J]. Journal of Experimental Botany, 2012, 63(17):6173-6185.
    [22]

    Ruffel S, Krouk G, Ristova D, et al. Nitrogen economics of root foraging:Transitive closure of the nitrate-cytokinin relay and distinct systemic signaling for N supply vs demand[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2011, 108(45):18524-18529.
    [23]

    Jie L, Jingjing Q, Fangfang H, et al. Net fluxes of ammonium and nitrate in association with H+ fluxes in fine roots of Populus popularis[J]. Planta, 2013, 237(4):919-931.
    [24]

    Cooke J E K, Martin T A, Davis J M. Short-term physiological and developmental responses to nitrogen availability in hybrid poplar[J].New Phytologist, 2005, 167:41-52.
    [25]

    Cooke J E, Weih M. Nitrogen storage and seasonal nitrogen cycling in Populus:bridging molecular physiology and ecophysiology[J]. New Phytologist. 2010, 167(1):19-30.
    [26] 今西三好, 无岛皓, 姚祥.以天冬酰胺含量为指标的桑树氮素营养状态简易诊断法[J].国外农学-蚕业, 1986(2):60-61.

    [27] 杨洪强, 高华君.植物精氨酸及其代谢产物的生理功能[J].植物生理与分子生物学学报, 2007, 33(1):1-8.

    [28] 王小乐, 迟天华, 刘颖鑫, 等.甘露醇和蔗糖对菊花低温离体保存的影响[J].核农学报, 2019, 33(01):60-68.

    [29]

    Zhao H, Su T, Huo L, et al. Unveiling the mechanism of melatonin impacts on maize seedling growth:sugar metabolism as a case[J]. Journal of Pineal Research, 2015, 59(2):255-266.
    [30]

    Rucha, Karve, Michael, et al. Evolutionary lineages and functional diversification of plant hexokinases[J]. Molecular Plant, 2010, 3(2):334-346.
    [31]

    Nunes-Nesi A, Fernie A R, Stitt M. Metabolic and signaling aspects underpinning the regulation of plant carbon nitrogen interactions[J]. Molecular Plant, 2010, 3(6):973-996.
  • [1] 杨秀清韩有志 . 关帝山森林土壤有机碳和氮素的空间变异特征. 林业科学研究, 2011, 24(2): 223-229.
    [2] 舒文波赵树堂章晶晶周艺华卢孟柱 . 超量表达FBL1对84K杨根系和生长量影响研究. 林业科学研究, 2015, 28(6): 871-876.
    [3] 苏梦云周国璋金正法 . 杉木幼苗叶片蔗糖和淀粉含量的昼夜变化. 林业科学研究, 1996, 9(6): 650-653.
    [4] 陈海游张忠和 . 蔗糖对胭脂虫的助食作用研究. 林业科学研究, 2013, 26(5): 628-635.
    [5] 陈又清陈晓鸣李昆石雷陈智勇 . 紫胶蚧与寄主植物氨基酸含量关系初步研究. 林业科学研究, 2004, 17(3): 362-367.
    [6] 范国强蒋建平 . 泡桐丛枝病发生与叶片蛋白质和氨基酸变化关系的研究. 林业科学研究, 1997, 10(6): 570-573.
    [7] 徐福元葛明宏赵振东朱克恭 . 马尾松不同种源氨基酸含量与抗松材线虫病的关系. 林业科学研究, 1998, 11(3): 313-318.
    [8] 王力朋晏紫伊李吉跃王军辉何茜苏艳董菊兰 . 氮素指数施肥对3个楸树无性系光合特性的影响. 林业科学研究, 2013, 26(1): 46-51.
    [9] 刘力龚宁夏国华吕健全黄坚钦 . 山核桃种仁蛋白质及氨基酸成分含量的变异分析. 林业科学研究, 2006, 19(3): 376-378.
    [10] 王培蒂秦国峰 . 马尾松种子发育过程中种仁贮藏物质的积累与变化. 林业科学研究, 1996, 9(2): 146-151.
    [11] 费学谦徐天森黎戊贤 . 竹卵圆蝽危害竹的养分变化. 林业科学研究, 1990, 3(5): 509-513.
    [12] 石全太杨校生 . 贮藏保鲜方法与再加工对毛竹笋营养成分的影响*. 林业科学研究, 1994, 7(5): 492-497.
    [13] 冯颖赵丽芳陈晓鸣周德群王绍云惠雅玲 . 翘鳞肉齿菌营养成分分析及价值评价. 林业科学研究, 1998, 11(5): 498-501.
    [14] 倪穗李纪元李辛雷范正琪田敏鲁仪增 . 牛奶子果实性状及营养成分的产地与株间变异研究. 林业科学研究, 2007, 20(3): 404-407.
    [15] 阎艳霞王玉魁孟伟杨超伟崔令军张东 . 6种引进滨藜属植物叶片的饲用营养价值评价. 林业科学研究, 2008, 21(5): 693-696.
    [16] 冯颖何钊徐珑峰张忠和石雷陈晓鸣 . 云南栽培玛咖的营养成分分析与评价. 林业科学研究, 2009, 22(5): 696-700.
    [17] 杨璞陈晓鸣朱家颖丁伟峰刘魏魏 . 白蜡虫β1-微管蛋白基因cDNA克隆及序列分析. 林业科学研究, 2011, 24(4): 423-427.
    [18] 胡宗达刘世荣史作民刘兴良何飞 . 川滇高山栎林土壤氮素和微生物量碳氮随海拔变化的特征. 林业科学研究, 2012, 25(3): 261-268.
    [19] 骆土寿陈步峰陈永富杨彦臣杨秀森李大江 . 海南岛霸王岭热带山地雨林采伐经营初期土壤碳氮储量. 林业科学研究, 2000, 13(2): 123-128.
    [20] 李帅锋苏建荣刘万德郎学东黄小波贾呈鑫卓童清唐红燕 . 思茅松人工林土壤有机碳和氮储量变化. 林业科学研究, 2015, 28(6): 810-817.
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出版历程
  • 收稿日期:  2019-02-22
  • 录用日期:  2019-04-06
  • 刊出日期:  2019-12-01

不同氮素供给水平对84K杨幼苗碳氮代谢的影响

    通讯作者: 罗志斌, luozbbill@163.com
  • 中国林业科学研究院林业研究所, 北京 100091
基金项目:  树木生长适应环境的分子生理基础 2016YFD0600105

摘要:  目的 解析不同氮素供给水平下杨树幼苗的生长与碳氮代谢特征,对提高木材产量和品质以及科学制定人工林养分管理策略具有重要意义。 方法 分别以高氮、正常氮和低氮供给处理84K杨(Populus alba×P. glandulosa),分析其生长特征与碳氮代谢变化特征。 结果 高氮处理增加了净光合速率、根中的蔗糖含量以及叶中的淀粉含量和生物量,促进84K杨的碳代谢;高氮处理促进了84K杨根中NH4+和NO3-吸收和积累,提高了谷氨酸合成酶的活性,增加了大多数氨基酸含量以及总氮含量,促进了84K杨的氮代谢。低氮处理降低了净光合速率、叶中的大多数可溶性糖含量和淀粉含量,抑制84K杨的碳代谢;低氮处理会降低植物体内NH4+、NO3-含量,降低根中的硝酸还原酶(NR)的活性,降低氨基酸含量以及总氮含量,抑制84K杨的氮代谢。 结论 这些结果表明84K杨中的碳代谢与氮代谢响应环境中的氮素的盈亏变化表现出很高的一致性,即外界环境中氮素充足时,碳代谢随着氮代谢的增加而增加;而外界环境中氮素亏缺时,碳代谢随着氮代谢的降低而降低。

English Abstract

  • 杨树作为一种快速生长的木本植物,广泛分布在我国北方地区,具有易繁殖、生长快、适应性强等特性[1],其在造纸业、碳固定工程以及生物燃料生产等方面发挥着重要作用[2-5]。为了满足粮食需求,大量的土地被用来种植农作物,而大多数杨树则生长在氮素贫瘠地区[6]。但由于杨树本身对氮素的需求量很大,所以为了加快杨树的生长,往往需要施加大量的氮肥。

    氮素是植物生长发育必需的大量元素之一,是植物体内氨基酸、蛋白质、核酸等的重要组成成分[7]。氮素会影响植物器官的形成和发育,如低氮可以促进植物主根的生长和侧根的伸长[8]。氮素是叶绿素的重要组成成分,外界环境中氮素的盈亏变化会影响到植物的光合作用,同时氮素还是催化植物体内大多数生理生化反应的酶蛋白的组成成分。碳氮代谢是植物体内生长发育最为重要的两个代谢途径,其在植物生长发育期间的动态变化会影响光合产物的合成、转运,矿物营养的吸收以及蛋白质的合成。碳代谢过程包括碳的固定、碳水化合物的合成与利用等过程,其中形成的中间产物蔗糖是高等植物进行光合作用产生的主要产物,亦是植物体内主要的碳运输形式[9]。氮代谢的过程包括氮的吸收、积累、氨基酸的合成与利用,最后用于植物的生长等过程。其中无