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杜鹃红山茶CaAPX基因的克隆、表达及功能分析

王江英 范正琪 殷恒福 李辛雷 吴斌 李纪元

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杜鹃红山茶CaAPX基因的克隆、表达及功能分析

  • 基金项目:

    国家‘十二·五’科技支撑计划课题(2012BAD01B0703);浙江省花卉新品种选育重大科技专项(2012C12909-6);浙江省与中国林业科学研究院省院合作林业科技项目(2012SY02);国家农业科技成果转化资金项目(GB2013GB24320606);国家林业局引进国际先进林业科学技术项目(948项目)(2014-4-16)

  • 中图分类号: S718.46

Cloning, Expression and Functional Analysis of CaAPX Gene from Camellia azalea

  • CLC number: S718.46

  • 摘要: [目的] 利用分子生物学技术探讨杜鹃红山茶CaAPX基因的表达模式及在模式植物烟草中所起的抗寒、耐热作用,为今后山茶花抗逆育种奠定基础。[方法] 根据山茶花同源序列设计特异性引物,利用同源克隆和3',5'-RACE技术,从杜鹃红山茶嫩叶组织中克隆出抗坏血酸过氧化物酶(APX),命名为CaAPX,基因全长1 097 bp,开放阅读框753 bp,编码250个氨基酸。实时荧光定量PCR对杜鹃红山茶7种组织和温度胁迫下该基因的表达模式进行分析。[结果] 表明:CaAPX基因在杜鹃红山茶7种组织中均得到表达,但表达水平不一,表达量由高到低依次为:未成熟果实 >嫩叶 >花苞 >叶芽 >种胚 >花瓣 >花芽,其中,未成熟果实中的表达量是其它组织的2.6811.44倍;温度胁迫处理8 h后该基因呈上调表达,CaAPX基因表达量分别是0 h的3.49和2.67倍。CaAPX基因转化烟草分析表明,过量表达CaAPX基因后,APX活性提高了2.584.09倍,抗坏血酸(AsA)含量提高了2.673.56倍,并且转基因烟草植株的抗寒、耐热能力也获得提高。[结论] 通过过量表达CaAPX基因能够提高烟草植株的抗寒、耐热性,为山茶花抗逆育种提供了科学依据。
  • [1] 闵天禄. 世界山茶属的研究[M]. 昆明: 云南科学技术出版社, 2000: 35-44.

    [2] 庄瑞林. 中国山茶[M]. 海口: 海南人民出版社, 1989.

    [3]

    Sofo A, Tuzio A C, Dichio B, et al. Influence of water deficit and rewatering on the components of the asccorbate-glutathione cycle in four interspecific Prunus hybrids [J]. Plant Science, 2005, 169(2): 403-412.
    [4]

    Suzuki N, Mittler R. Reactive oxygen species and temperature stress: A delicate balance between signaling and destruction[J]. Physiologia Plantarum, 2006, 126(1): 45-51.
    [5]

    Lu Z, Liu D, Liu S. Two rice cytosolic ascorbate peroxidases differentially improve salt tolerance in transgenic Arabidopsis[J]. Plant Cell Reports, 2007, 26(10): 1909-1917.
    [6]

    Gill S S, Tuteja N. Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants [J]. Plant Physiol Biochemistry, 2010, 48(12): 909-930.
    [7]

    Foyer C H, Halliwell B. The presence of glutathione and glutathione reductase in chloroplasts: a proposed role in ascorbic acid metabolism [J]. Planta, 1976, 133(1): 21-25.
    [8]

    Jablonski P P, Anderson J W. Light dependent reduction of hydrogen peroxide by ruptured pea chloroplasts [J]. Plant Physiology, 1981, 67(6): 1239-1244.
    [9]

    Hossain M A, Asada K. Purification of dehydroascorbate reductase from spinach and its characterization as a thiol enzyme [J]. Plant and Cell Physiology, 1984, 25(1): 85-92.
    [10]

    Yutaka S, Toyotaka M, Hideyuki F, et al. Heat shock-mediated APX gene expression and protection against chilling injury in rice seedlings [J]. Journal of Experimental Botany, 2001, 52(354): 145-151.
    [11]

    Tang L, Kwon S Y, Kim S H, et al. Enhanced tolerance of transgenic potato plants expressing both superoxide dismutase and ascorbate peroxidase in chloroplasts against oxidative stress and high temperature [J]. Plant Cell Reports, 2006, 25(12): 1380-1386.
    [12]

    Kim M D, Kim Y H, Kwon S Y, et al. Enhanced tolerance to methyl viologen-induced oxidative stress and high temperature in transgenic potato plants overexpressing the CuZnSOD, APX and NDPK2 genes [J]. Physiologia Plantarum, 2010, 140(2): 153-162.
    [13] 朱高浦, 李纪元. 珍稀濒危植物张氏红山茶研究进展(综述)[J]. 亚热带植物科学, 2009,38(3):83-89.

    [14]

    Horsch R B, Fry J E, Hoffmann N L, et al. A simple and general method for transferring genes into plants [J]. Science, 1985, 227(4691): 1229-1231.
    [15]

    Nakano Y, Asada K. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts [J]. Plant and Cell Physiology, 1981, 22(5): 867-880.
    [16]

    Kampfenkel K, van Montagu M, Inze D. Extraction and determination of ascorbate and dehydroascorbate from plant tissue [J]. Analytical Biochemistry, 1995, 225(1): 165-167.
    [17]

    Sairam R K, Srivastava G C. Changes in antioxidant activity in sub-cellular fractions of tolerant and susceptible wheat genotypes in response to long term salt stress [J]. Plant Science, 2002, 162(6): 897-904.
    [18] 韩立敏. 丹参APX和GPX基因克隆及其表达分析[D]. 西安: 陕西师范大学, 2007: 22-44.

    [19] 孙 云, 林玉玲, 赖钟雄, 等. 茶树品种及萎凋过程中叶片APX基因表达的qPCR分析[J]. 福建农林大学学报: 自然科学版, 2012,41(4): 476-481.

    [20] 邵 巍. 龙眼胚性培养物胞质型apx基因克隆及其表达研究[D]. 福州: 福建农林大学, 2008: 84-95.

    [21] 许传俊, 孙叙卓, 李 玲, 等. 蝴蝶兰抗坏血酸过氧化物酶基因克隆及其表达研究[J]. 园艺学报, 2012, 39(4): 769-776.

    [22] 刘慧春. 红掌‘阿技巴马’低温相关基因AOX、CAT和APX的表达分析、功能验证及遗传转化体系的构建[D]. 杭州: 浙江大学, 2012: 100-129.

    [23] 陈 莉, 辛海波, 孙向荣, 等. 百合APX基因的克隆及转LlAPX提高拟南芥耐盐性[J]. 园艺学报, 2010, 37(12): 1983-1990.

    [24]

    Kornyeyev D, Dmytro K, Barry A, et al. Enhanced photochemical light utilization and decreased chilling-induced photoinhibition of photosystem II in cotton overexpresion genes encoding chloroplast-targeted antioxidant enzymes [J]. Physiologia Plantarum, 2001, 133(1):323-331.
    [25]

    Battraw M J, Hall T C. Histochemical analysis of CaMV35S Promoter β-glucuronidase gene expression in transgenic rice plants [J]. Plant Molecular Biology, 1990, 15(4): 527-538.
    [26]

    Lim S, Kim Y H, Kim S H, et al. Enhanced tolerance of transgenic sweetpotato plants expressing both superoxide dismutase and ascorbate peroxidase in chloroplasts against methyl viologen-mediated oxidative stress [J]. Molecular Breeding, 2007, 19(3): 227-239.
    [27] 王雨水. 低温锻炼对冷胁迫下油茶幼苗光合速率与抗氧化酶活性的影响[J]. 福建林业科技, 2011, 38(1): 41-46.

    [28] 安辽原, 牛向丽, 黄龙翔, 等. 过量表达OsAPX1基因增强水稻的抗热和抗氧化能力[J]. 中国农业科技导报, 2012,14(5): 28-32.

    [29] 马 箐. 过量表达毛白杨APX基因增强植物对非生物胁迫的抗性[D]. 济南: 山东师范大学, 2012: 37-59.

  • [1] 单雪萌王思宁朱成磊高志民 . 毛竹 PeCPD 基因克隆与表达分析. 林业科学研究, 2019, 32(5): 58-66. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2019.05.008
    [2] 安静万友名马宏刘雄芳张秀姣曹毓蓉李正红 . 地涌金莲MlCYP734A6基因的克隆与表达分析. 林业科学研究, 2021, 34(3): 37-45. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.03.004
    [3] 史倩倩周琳李奎王雁 . 云南野生黄牡丹PlbHLH3转录因子基因的克隆与表达. 林业科学研究, 2015, 28(4): 488-496.
    [4] 林琳李健李慧玉穆怀志姜静 . 逆境胁迫下柽柳脂质转运蛋白基因 (ThLTP)的克隆与功能初步分析. 林业科学研究, 2012, 25(4): 492-499.
    [5] 姜波高彩球王玉成于丽丽杨传平 . 刚毛柽柳富含甘氨酸RNA结合蛋白ThGRP1基因克隆与表达分析. 林业科学研究, 2011, 24(2): 256-262.
    [6] 余义勋张俊卫孙振元包满珠 . 香石竹ACC氧化酶基因的克隆与植物表达载体构建. 林业科学研究, 2002, 15(3): 256-260.
    [7] 宣磊王芝权殷云龙华建峰 . 中山杉406ThSHR3基因的克隆、表达及蛋白互作研究. 林业科学研究, 2021, 34(4): 32-39. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.04.004
    [8] 易敏张守攻谢允慧孙晓梅 . 日本落叶松咖啡酸-O-甲基转移酶基因 LkCOMT的克隆及单核苷酸多态性分析. 林业科学研究, 2013, 26(S1): 52-59.
    [9] 刘英冠吴庆珂何关顺汪阳东杨素素陈益存高暝 . 山鸡椒1-脱氧木酮糖-5-磷酸还原异构酶 DXR基因的克隆和SNP分析. 林业科学研究, 2015, 28(1): 93-100.
    [10] 易敏张守攻谢允慧孙晓梅 . 日本落叶松纤维素合酶基因片段的克隆及单核苷酸多态性分析. 林业科学研究, 2015, 28(3): 303-310.
    [11] 范艳如兰倩韩素英齐力旺张立峰 . 日本落叶松LaSPL2LaSPL3在体细胞胚发育中的表达分析. 林业科学研究, 2021, 34(5): 79-87. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.005.009
    [12] 王菁李爱王春国宋文芹陈成彬 . 日本落叶松 UDPGDH基因的cDNA克隆和表达分析. 林业科学研究, 2013, 26(S1): 76-81.
    [13] 黄国文管天球赵雨云陈莫林刘宏辉 . 油茶转录因子基因CoSOC1-like的克隆和表达分析. 林业科学研究, 2022, 35(2): 129-139. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2022.02.015
    [14] 李龙张立峰齐力旺韩素英 . 日本落叶松体细胞胚胎发生相关基因LaSERK1的克隆与表达分析. 林业科学研究, 2013, 26(6): 673-680.
    [15] 张婷丁贵杰文晓鹏 . 马尾松紫色酸性磷酸酶基因PmPAP1的克隆与表达模式分析. 林业科学研究, 2016, 29(6): 797-806.
    [16] 张恺恺杨立莹丰美静张林凤陈段芬邱德有杨艳芳 . 曼地亚红豆杉NAC基因家族鉴定及表达分析. 林业科学研究, 2022, 35(2): 97-103. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2022.02.011
    [17] 章晶晶郭英华赵树堂卢孟柱 . 杨树PtRRI基因的组织特异性表达模式分析. 林业科学研究, 2018, 31(2): 34-40. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.02.005
    [18] 赵岩秋周厚君魏凯丽江成宋学勤卢孟柱 . 杨树中Ⅰ类KNOX基因结构、表达与功能分析. 林业科学研究, 2018, 31(4): 118-125. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.04.017
    [19] 朱建峰李万峰杨文华韩素英齐力旺 . 中间锦鸡儿生长发育过程中5个miRNAs及其靶基因的表达模式分析. 林业科学研究, 2013, 26(S1): 45-51.
    [20] 程华李琳玲许锋王燕程水源 . 银杏过氧化氢酶基因CAT1的克隆及表达分析. 林业科学研究, 2010, 23(4): 493-499.
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出版历程
  • 收稿日期:  2015-05-12

杜鹃红山茶CaAPX基因的克隆、表达及功能分析

  • 1. 中国林业科学研究院亚热带林业研究所, 浙江省林木育种技术研究重点实验室, 浙江 杭州 311400
  • 2. 江苏省连云港市农业科学院花卉研究中心, 江苏 连云港 222006
基金项目:  国家‘十二·五’科技支撑计划课题(2012BAD01B0703);浙江省花卉新品种选育重大科技专项(2012C12909-6);浙江省与中国林业科学研究院省院合作林业科技项目(2012SY02);国家农业科技成果转化资金项目(GB2013GB24320606);国家林业局引进国际先进林业科学技术项目(948项目)(2014-4-16)

摘要: [目的] 利用分子生物学技术探讨杜鹃红山茶CaAPX基因的表达模式及在模式植物烟草中所起的抗寒、耐热作用,为今后山茶花抗逆育种奠定基础。[方法] 根据山茶花同源序列设计特异性引物,利用同源克隆和3',5'-RACE技术,从杜鹃红山茶嫩叶组织中克隆出抗坏血酸过氧化物酶(APX),命名为CaAPX,基因全长1 097 bp,开放阅读框753 bp,编码250个氨基酸。实时荧光定量PCR对杜鹃红山茶7种组织和温度胁迫下该基因的表达模式进行分析。[结果] 表明:CaAPX基因在杜鹃红山茶7种组织中均得到表达,但表达水平不一,表达量由高到低依次为:未成熟果实 >嫩叶 >花苞 >叶芽 >种胚 >花瓣 >花芽,其中,未成熟果实中的表达量是其它组织的2.6811.44倍;温度胁迫处理8 h后该基因呈上调表达,CaAPX基因表达量分别是0 h的3.49和2.67倍。CaAPX基因转化烟草分析表明,过量表达CaAPX基因后,APX活性提高了2.584.09倍,抗坏血酸(AsA)含量提高了2.673.56倍,并且转基因烟草植株的抗寒、耐热能力也获得提高。[结论] 通过过量表达CaAPX基因能够提高烟草植株的抗寒、耐热性,为山茶花抗逆育种提供了科学依据。

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