• 中国中文核心期刊
  • 中国科学引文数据库(CSCD)核心库来源期刊
  • 中国科技论文统计源期刊(CJCR)
  • 第二届国家期刊奖提名奖

留言板

尊敬的读者、作者、审稿人, 关于本刊的投稿、审稿、编辑和出版的任何问题, 您可以本页添加留言。我们将尽快给您答复。谢谢您的支持!

姓名
邮箱
手机号码
标题
留言内容
验证码

红椿SSR-PCR体系建立和多态性引物筛选

湛欣 鲁好君 赵帅 陈晓阳 邓小梅

引用本文:
Citation:

红椿SSR-PCR体系建立和多态性引物筛选

  • 基金项目:

    国家林业局公益性行业专项(201004020)。

  • 中图分类号: S792.99

Establishment and Primer Screening of SSR-PCR Reaction System for Toona ciliata

  • CLC number: S792.99

  • 摘要: [目的] 本研究旨在建立红椿SSR-PCR最佳反应体系,并筛选适于红椿SSR分析的高多态性引物。[方法] 通过L16(45)正交试验设计,确立红椿SSR-PCR最佳反应体系;利用优化后的体系对来自楝科植物的135对SSR引物,在6个不同的红椿居群中进行扩增,筛出能有效扩增的引物并进一步筛选出适于红椿的高多态性引物。[结果] (1)10 μL基于荧光dUTP的SSR-PCR体系中包含:10×buffer 1.0 μL,Taq 酶(5 U·μL-1) 0.1 μL, MgCl2(25 mmol·L-1)0.8 μL, dNTP (200 mmol·L-1)0.025 μL,荧光 dUTP(1 nmol·μL-1)0.01 μL,引物(10 mmol·L-1) 0.8 μL,DNA模板45 ng剩余用ddH2O补足;(2)筛选出29对能有效扩增的引物,复选后获得了12对适于红椿SSR分析的高多态性引物。[结论] 建立了SSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物,为红椿的分子标记等遗传学研究提供了基础。
  • [1] 李志辉,李柏海,祁承经,等. 我国南方珍贵用材树种资源的重要性及其发展策略[J]. 中南林业科技大学学报. 2012, 32(11): 1-8.

    [2] 甘文峰,余 林,叶金山,等. 珍贵用材树种毛红椿研究进展综述[J]. 江西林业科技. 2014(05): 33-37.

    [3] 黄红兰,张 露,郭晓燕,等. 九连山毛红椿种群的结实特性及其生殖力[J]. 林业科学. 2013(07): 170-174.

    [4] 刘 军,陈益泰,罗阳富,等. 毛红椿天然林群落结构特征研究[J]. 林业科学研究. 2010, 23(1): 93-97.

    [5] 李明芳,郑学勤. 开发SSR引物方法之研究动态[J]. 遗传. 2004, 26(5): 769-776.

    [6] 刘 军,陈益泰,姜景民,等. 毛红椿群体遗传结构的SSR分析[J]. 林业科学研究. 2009(01): 37-41.

    [7]

    Li F, Gan S. An Optimised Protocol for Fluorescent-dUTP Based SSR Genotyping and its Application to Genetic Mapping in Eucalyptus[J]. SILVAE GENETICA. 2011, 60(1): 18-25.
    [8]

    Lemes M R, Esashika T, Gaoue O G. Microsatellites for mahoganies: Twelve new loci for Swietenia macrophylla and its high transferability to Khaya senegalensis[J]. American Journal of Botany. 2011, 98(8): e207-e209.
    [9]

    Dayanandan S, Dole J, Bawa K. Population structure delineated with microsatellite markers in fragmented populations of a tropical tree, Carapa guianensis(Meliaceae)[J]. Molecular Ecology. 1999, 8(10): 1585-1592.
    [10]

    Liu J, Jiang J M, Chen Y T. Genetic diversity of central and peripheral populations of Toona ciliata var. pubescens, an endangered tree species endemic to China[J]. Genet Mol Res. 2014, 13(2): 4579-4590.
    [11]

    Cespedes M, Gutierrez M V, Holbrook N M, et al. Restoration of genetic diversity in the dry forest tree Swietenia macrophylla(Meliaceae) after pasture abandonment in Costa Rica[J]. Molecular Ecology. 2003, 12(12): 3201-3212.
    [12]

    Sexton G J, Frere C H, Dieters M J, et al. Development and characterization of microsatellite loci for Khaya senegalensis (Meliaceae)[J]. American Journal of Botany. 2010, 97(11): e111-e113.
    [13]

    Pereira M F, Bandeira L F, Blanco A J V, et al. Isolation and characterization of microsatellite loci in Cabralea canjerana (Meliaceae)[J]. American Journal of Botany. 2010, 98(1): e10-e12.
    [14]

    White G, Powell W. Isolation and characterization of microsatellite loci in Swietenia humilis (Meliaceae): an endangered tropical hardwood species[J]. Molecular Ecology. 1997, 6(9): 851-860.
    [15]

    Boontong C, Pandey M, Changtragoon S. Isolation and characterization of microsatellite markers in Indian neem (Azadirachta indica var. indica A. Juss) and cross-amplification in Thai neem (A-indica var. siamensis Valenton)[N]. 03/08/2013(669-671).
    [16]

    Hernandez G, Buonamici A, Walker K. Isolation and characterization of microsatellite markers for Cedrela odorata. (Meliaceae), a high value neotropical tree[J]. Conservation Genetics. 2008, 9(2): 457-459.
    [17]

    Karan M, Evans D S, Reilly D, et al. Rapid microsatellite marker development for African mahogany (Khaya senegalensis, Meliaceae) using next-generation sequencing and assessment of its intra-specific genetic diversity[J]. Molecular Ecology Resources. 2012, 1(2): 344-353.
    [18]

    White G, Powell W. Cross-species amplification of SSR loci in the Meliaceae family[J]. Molecular Ecology. 1997, 6(12): 1195-1197.
    [19]

    Lemes M, Brondani R, Grattapaglia D. Multiplexed Systems of Microsatellite Markers for Genetic Analysis of Mahogany, Swietenia macrophylla King (Meliaceae), a Threatened Neotropical Timber Species[J]. Journal Of Heredity. 2002, 93(4): 287-291.
    [20]

    Hanaoka S, Muturi G M, Watanabe A. Isolation and characterization of microsatellite markers in Melia volkensii Gurke[J]. Conservation Genetics Resources. 2012, 4(2): 395-398.
    [21]

    De Lima P F, Ramos F N, Zucchi M I, et al. Development and characterization of microsatellite markers from Guarea guidonia (Meliaceae), a tree species from different habitats within the Brazilian Atlantic forest[J]. Conservation Genetics Resources. 2009, 1(1): 171-173.
    [22]

    Magnusson P K E, Wilander E, Gyllensten U. Analysis of loss of heterozygosity in microdissected tumor cells from cervical carcinoma using fluorescent dUTP labeling of PCR products[J]. Biotechniques. 1996, 21(5): 844-847.
    [23]

    Woolbright S A, Difazio S P, Yin T, et al.. A dense linkage map of hybrid cottonwood (Populus fremontii x P-angustifolia) contributes to long-term ecological research and comparison mapping in a model forest tree[J]. Heredity. 2008, 100(1): 59-70.
    [24]

    Busch J D, Benford R, Pearson T, et al. Development of polymorphic tetranucleotide microsatellites for pinyon jays (Gymnorhinus cyanocephalus)[J]. Conservation Genetics. 2009, 10(3): 689-691.
    [25]

    Macavoy E S, Mcgibbon L M, Sainsbury J P, et al. Genetic variation in island populations of tuatara (Sphenodon spp) inferred from microsatellite markers. [J]. Conservation Genetics., 8(2): 305-318.
    [26] 徐 阳,陈金慧,王 颖,等. 杉木SSR-PCR体系优化[J]. 林业科技开发. 2014(01): 15-20.

    [27] 陈怀琼,隋 春,魏建和.植物SSR引物开发策略简述[J]. 分子植物育种. 2009, 7(4): 845-851.

    [28] 曾庆国,陈艺燕. 微卫星位点筛选方法综述[J]. 生态科学. 2005(04): 368-372.

    [29] 王 丽,赵桂仿. 植物不同种属间共用微卫星引物的研究[J]. 西北植物学报,2005(08): 1540-1546.

  • [1] 李培阙青敏王芳李俊成朱芹廖柏勇陈晓阳 . 红椿SRAP反应体系优化及引物筛选. 林业科学研究, 2017, 30(1): 10-17. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2017.01.002
    [2] 王芳廖柏勇李培刘明骞李俊成吴琳瑛林玮陈晓阳 . 苦楝SSR-PCR反应体系优化及引物筛选. 林业科学研究, 2016, 29(2): 167-175.
    [3] 朱芹李培周鹏张俊杰阙青敏惠文凯陈晓阳 . 刨花润楠SSR-PCR体系优化及天然种群遗传多样性研究. 林业科学研究, 2019, 32(4): 70-78. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2019.04.010
    [4] 黄海燕杜红岩乌云塔娜朱高浦 . 基于SSR分子标记的杜仲遗传多样性体系建立. 林业科学研究, 2013, 26(6): 795-799.
    [5] 张艳丽王雁李正红马宏 . 基于牡丹EST信息的滇牡丹SSR标记开发. 林业科学研究, 2011, 24(2): 171-175.
    [6] 黄秦军苏晓华张香华 . 利用AFLP和SSR标记构建美洲黑杨×青杨遗传图谱. 林业科学研究, 2004, 17(3): 291-299.
    [7] 张香华苏晓华黄秦军张冰玉 . 欧洲黑杨育种基因资源SSR多态性比较研究. 林业科学研究, 2006, 19(4): 477-483.
    [8] 吴敏杜红岩乌云塔娜刘攀峰荆腾 . 杜仲基因组微卫星特征及SSR标记开发. 林业科学研究, 2015, 28(3): 387-393.
    [9] 饶龙兵杨汉波郭洪英段红平陈益泰 . 基于桤木属转录组测序的SSR分子标记的开发. 林业科学研究, 2016, 29(6): 875-882.
    [10] 殷继艳张建国何彩云保尔江段爱国曾艳飞王健 . 新疆额尔齐斯河流域杨属植物种间关系的SSR分析. 林业科学研究, 2016, 29(1): 17-24.
    [11] 杜明凤丁贵杰 . 基于马尾松干旱转录组的抗旱功能SSR位点分析. 林业科学研究, 2018, 31(5): 9-19. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2018.05.002
    [12] . 油茶SRAP-PCR反应体系的优化. 林业科学研究, 2010, 23(2): 302-307.
    [13] 刘梦培傅大立李芳东傅建敏田敏梁臣 . 华仁杏杂种鉴定及遗传变异分析. 林业科学研究, 2012, 25(1): 88-92.
    [14] 郑书星张建国段爱国何彩云保尔江王健 . 新疆阿尔泰地区白杨派3个树种半同胞家系子代遗传多样性分析. 林业科学研究, 2013, 26(3): 366-372.
    [15] 熊春艳龚榜初应尚蛟吴开云江锡兵赵献民 . 不同产地金枣柿遗传变异研究. 林业科学研究, 2014, 27(2): 225-232.
    [16] 郑书星张建国段爱国何彩云保尔江王健 . 额尔齐斯河流域银白杨克隆结构及多样性研究. 林业科学研究, 2013, 26(4): 426-432.
    [17] 王天翼徐悦王罗云张建国曾艳飞 . 中国沙棘和云南沙棘的遗传分化及遗传多样性. 林业科学研究, 2021, 34(4): 13-21. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.04.002
    [18] 何旭东郑纪伟田雪瑶教忠意窦全琴 . 薄壳山核桃品种亲缘关系分析与指纹图谱构建. 林业科学研究, 2021, 34(4): 95-102. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.04.011
    [19] 李振张勇魏永成孟景祥仲崇禄 . 短枝木麻黄种子散布模式及子代群体的遗传多样性分析. 林业科学研究, 2021, 34(5): 24-31. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2021.005.003
    [20] 王帅邵芬娟李论芦强邱德有 . 穗花杉的转录组测序及其转录组特性分析. 林业科学研究, 2017, 30(5): 759-764. doi: 10.13275/j.cnki.lykxyj.2017.05.008
  • 加载中
计量
  • 文章访问数:  2790
  • HTML全文浏览量:  268
  • PDF下载量:  782
  • 被引次数: 0
出版历程
  • 收稿日期:  2015-07-06

红椿SSR-PCR体系建立和多态性引物筛选

  • 1. 华南农业大学 林学与风景园林学院/广东省森林植物种质创新与利用重点实验室, 广东 广州 510642
基金项目:  国家林业局公益性行业专项(201004020)。

摘要: [目的] 本研究旨在建立红椿SSR-PCR最佳反应体系,并筛选适于红椿SSR分析的高多态性引物。[方法] 通过L16(45)正交试验设计,确立红椿SSR-PCR最佳反应体系;利用优化后的体系对来自楝科植物的135对SSR引物,在6个不同的红椿居群中进行扩增,筛出能有效扩增的引物并进一步筛选出适于红椿的高多态性引物。[结果] (1)10 μL基于荧光dUTP的SSR-PCR体系中包含:10×buffer 1.0 μL,Taq 酶(5 U·μL-1) 0.1 μL, MgCl2(25 mmol·L-1)0.8 μL, dNTP (200 mmol·L-1)0.025 μL,荧光 dUTP(1 nmol·μL-1)0.01 μL,引物(10 mmol·L-1) 0.8 μL,DNA模板45 ng剩余用ddH2O补足;(2)筛选出29对能有效扩增的引物,复选后获得了12对适于红椿SSR分析的高多态性引物。[结论] 建立了SSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物,为红椿的分子标记等遗传学研究提供了基础。

English Abstract

参考文献 (29)

目录

    /

    返回文章
    返回