选择生长健壮、能正常开花结果的油茶为试验材料采集对象，材料种植于中南林业科技大学校园，常规水肥管理。本研究中以开花当天未授粉雌蕊的成熟花柱为试验材料，进行显微和超微结构研究。

显微结构观测参照高超^[12]的方法进行样品制备。将油茶未授粉的成熟花柱取下后放置在卡诺(Carnoy’ s)固定液[95%乙醇:冰醋酸(V/V)=3:1]中固定12 h，同时抽尽材料中的空气，后转入到70%的酒精溶液中并置于4℃冰箱保存备用。将固定好的材料进行适当修整后经各浓度酒精逐级脱水、二甲苯透明、石蜡渗透后包埋，石蜡切片机(Leica RM2235，Germany)切片，厚度为8 μm。后经粘片、脱蜡、复水、4%硫酸铁铵媒染3 h、0.8%爱氏(Ehrlich’ s)苏木精染色25 min、2.0%硫酸铁铵分色20 min、再经脱水、0.2%曙红染色，最后用加拿大树胶制作永久封片。最后于光学显微镜(Olympus BX-51，Japan)下拍照。

扫描电镜观测的制样是用镊子和解剖刀小心取下并切割花柱，用2.5%戊二醛固定液(0.1 mol·L^-1磷酸缓冲液配制)前固定2 h，磷酸缓冲液(0.1 mol·L^-1)洗涤后用1%锇酸固定液(0.1 mol·L^-1磷酸缓冲液配制)后固定2 h，磷酸缓冲液(0.1 mol·L^-1)洗涤后乙醇梯度脱水，过渡到叔丁醇中后，冷冻干燥。将样品摆放在样品台上放入离子溅射仪中镀金20 min。用扫描电子显微镜(JSM-6390，Japan)进行观察、拍照。

超微结构制样是用解剖工具小心切下花柱，迅速投入到由2.5%戊二醛、0.1 mol·L^-1磷酸缓冲液(pH 7.2)配制的前固定液中，在4℃冰箱中固定4 h。用0.1 mol·L^-1磷酸缓冲液洗涤3次，每次30 min；再加入由1%锇酸、0.1 mol·L^-1磷酸缓冲液配制的后固定液在4℃冰箱中固定12 h。用上述缓冲液洗涤3次，每次30 min。后用丙酮梯度系列脱水，EMbed 812树脂包埋。包埋块在超薄切片机(Leica UC7，Germany)上用玻璃刀切取厚度为1 μm的半薄切片，用1%甲苯胺蓝染液染色20 s，光学显微镜拍照(Olympus BX-51，Japan)并观察、拍照。根据选取的典型切片，对树脂块再次修整后用钻石刀切为60 nm厚度的超薄切片，镀膜铜网捞片，醋酸双氧铀和柠檬酸铅双重染色(分别染色20 min)并晾干后，用透射电子显微镜(Hitachi TEM system 7700，Japan)观察、拍照。

油茶为完全花，开花当天雌蕊已成熟，具有完整的柱头、花柱和子房结构，雌蕊着生于花托之上(图 1A)。油茶为典型的湿性柱头，柱头表面密布乳突细胞，与柱头以下的花柱基本组织差异显著。乳突细胞呈狭长条状，排列紧密，细胞质浓厚，而基本组织的细胞呈椭圆状，排列较为疏松，仅能观察到细胞核，细胞质不明显(图 1B、C)。柱头上大量的乳突细胞展开最大面积可更多的接收花粉粒。乳突细胞间或表面具有丰富的分泌物(图 1D、E)，这为花粉萌发和识别提供基本的物质基础。油茶花柱通常由35根独立花柱共同组成，整个花柱长约1113 mm左右，上端约2/3的部分相互分离形成离生区，从2/3处开始(图 1A中a处)到花柱基部(图 1A中b处)每根之间相互连接形成合生区。离生区的每根独立花柱卷合形成中空的贝壳状(图 1F)，横切面观察每根花柱由外表皮、基本组织和花柱道内表皮构成(图 1G)。将花柱平展开后在荧光显微镜下观察外表皮和内表皮有明显差异，花柱道内表皮是花粉管生长的通道，内表皮由一层排列紧实近圆形细胞构成，这层细胞比基本组织细胞大而规则，在光镜下可观察到细胞核明显，细胞质浓厚，具有腺质细胞的特点(图 1H、I)，外表皮细胞为长型细胞，排列疏松，细胞核小(图 1J、K)，这些特征都反应了通道内表皮细胞在花柱成熟时活跃的状态。在花柱的合生区，外表皮、基本组织和花柱道内表皮各部位均逐渐合生(图 1L)，整个花柱从上到下呈现出花柱道逐渐贴合的趋势，越往下花柱道贴合越紧密，间隙也越来越小，特别是到花柱基部后，在离生区相互独立的每根花柱的花柱道在花柱基部(b处)聚合到一起，并且各自成为一道狭小的缝隙，同时各道之间相互连通(图 1M)，与花柱开始合生处(a处)的花柱道内表皮细胞相比，花柱基部的花柱道内表皮细胞排列更加紧密、规整，而且细胞更大，细胞中大液泡明显，细胞外有明显的分泌物(图 1N)。

图  1  油茶柱头和花柱的显微结构

Figure 1.  Microstructure of the stigma and style in C. oleifera

花柱是花粉管生长的通道，而柱头是花粉粒的接受体，是花粉最早接触雌蕊的部位，在花粉-柱头相互作用中起到重要作用。在对柱头的显微结构观察中，已观察到油茶柱头乳突细胞呈长条形，相互之间排列规整，通过超微结构观察到乳突细胞中细胞质浓厚，细胞器丰富，分布有大量内质网、高尔基体、多聚核糖体、线粒体、叶绿体和液泡等(图 2A)。在细胞壁外观察到有大量分泌物，为花粉萌发提供条件，这也是湿型柱头的特征，同时还观察到细胞壁存在内突的现象，这也是典型的腺质细胞的特征(图 2B)。在花柱基本组织细胞中，细胞内含物较少，细胞器也较少，细胞壁薄且壁外无分泌物(图 2C、D)，这些特征表明基本组织在花柱中主要行使从柱头到子房的结构支撑功能，并且从花柱上部到花柱基部的整个花柱中，花柱基本组织细胞的结构特征均无太大变化，比较一致；但在花柱通道细胞中情况则不同。观察花柱离生区的通道内表皮细胞发现，这一段花柱的内表皮细胞较大，细胞质比基本组织细胞稍多，可观察到的细胞器数量和种类均相对较多，主要以内质网、高尔基体和线粒体为主(图 2E)，另外一个明显的特征是该段花柱内表皮细胞的细胞壁非常厚，在壁外可以观察到有一些分泌物存在，这些分泌物与柱头的分泌物相比，所呈现的状态有一定差别(图 2F)；在花柱合生区部分的通道细胞中，细胞质较花柱离生区的通道细胞更浓厚，细胞器数量和种类也更丰富，主要以线粒体、内质网为主，在该细胞中同样观察到内突的现象(图 2G)。在此段花柱的细胞间隙和壁外可以观察到同样存在分泌物。这些细胞分泌物首先以团状形式(红色箭头)出现在细胞壁与质膜之间的区域，然后通过外排作用分泌至通道细胞间隙内(图 2H)。通道细胞内细胞质浓度、细胞器数量与种类在整个花柱中呈现逐渐增加的趋势。

图  2  油茶柱头和花柱的超微结构

Figure 2.  Ultrastructure of the stigma and style in C.oleifera

油茶开花当天雌蕊已完全成熟，此时柱头表面充满明显的液体分泌物，为典型的湿型柱头。在烟草^[15]、百合^[4]和大豆^[16]等植物中，也观察到成熟雌蕊柱头活跃的分泌细胞外产生并释放渗透物。根据对大量植物柱头类型的研究报道，湿型柱头分为有乳突和无乳突两种类型^[17]。在本研究中，从柱头纵切面结构看，可观察到油茶柱头表面密布大量的乳突细胞，为湿柱头中的有乳突类型。油茶开花当天的柱头有大量的分泌物覆盖在柱头表面，为花粉的附着、水合萌发提供了必要的基质，也在花粉与柱头的相互识别过程中起重要作用，特别是对远缘杂交和一些孢子体自交不亲和性植物研究尤为重要^[18-19]。油茶柱头观察到的分泌物是否为脂类物质以及分泌物中含有的具体成分还有待进一步研究。在油茶柱头细胞质中观察到含有液泡、叶绿体、线粒体、内质网等，发达的扩张内质网显示了与分泌作用相关。同时在柱头分泌面的壁观察到壁内突，这些都是典型的分泌细胞的特征。

花柱是支撑花粉管从柱头生长至子房的结构，也是配子体自交不亲和反应的发生部位。油茶花柱为开放型，具有中空的花柱道。与柱头相同，在本研究中也观察到油茶的开放型花柱中充满分泌物，即花柱道细胞也属于分泌细胞，这层特化的内表皮细胞也可称为通道细胞^[20]。在空心花柱植物中，花粉管沿着花柱通道生长，通道内表皮外聚集了大量分泌物，花粉管在分泌物中向下生长，花柱中的这些分泌物为花粉管生长提供了营养物质和引导花粉管定向生长^[21]。作者曾对油茶花粉管生长途径及双受精进程进行过详细报道^[13]，观察到油茶花粉管在花柱中沿着中空的花柱通道细胞表面生长并进入子房，在对山茶属植物茶树(Camellia sinensis)的研究中^[22-23]，也观察到花粉管在花柱中同样的生长情况。与花柱基本组织细胞相比，油茶的通道细胞在超微结构上表现为代谢活跃的细胞特征。细胞质中充满各种丰富的细胞器，包括线粒体、高尔基体、内质网等。在研究中，可以观察到细胞分泌物首先出现在细胞壁与质膜之间的区域，然后通过外排作用分泌至通道细胞间隙内。有学者研究报道^[24]，植物的自交不亲和性遗传学特征和抑制部位之间有密切的关系，植物的花粉管抑制作用发生在子房中的一个共同特征是花柱为开放型，花粉管与花柱组织必须密切接触才能发生抑制作用。本研究组在油茶自交不亲和性研究中也发现^[12]，油茶的自交不亲和反应发生在花柱基部接近子房处，具有后期自交不亲和性的特征。本研究中也发现花柱基部接近子房处的花柱通道是花柱中最窄的部位，此处的分泌物也是通道中最多的，整个花柱从柱头到子房表现为花柱道逐渐变窄、通道中的分泌物逐渐增多的特点。在配子体自交不亲和系统中，大多数不亲和的花粉在柱头萌发时不受影响，能够萌发产生花粉管并穿过柱头生长进入花柱，但在花柱中的不同部位停止生长。花粉从柱头上吸水，在渗出液中开始萌发。如果亲和，则花粉粒萌发后花粉管进入柱头并伸长穿过花柱组织；如果不亲和，则雌蕊产生拮抗反应，花粉管生长受到抑制，在不同部位停止生长。外壁蛋白和内壁蛋白是花粉壁上存在着的两类蛋白类物质，花粉与雌蕊之间的识别反应，正是基于花粉壁的蛋白质和柱头乳突细胞表面的蛋白质表膜之间的相互作用。花粉管的生长表现为胞质环流模式，当花粉管接触到液体物质时，外壁蛋白迅速释放，说明花粉壁蛋白作为识别因子，对花粉的接受或拒绝起到决定作用^[25]。有研究发现，花粉管在穿过柱头和花柱时，会诱导产生出一种花粉管转录体，说明雌蕊组织直接影响花粉管的基因表达水平^[26]。综合之前对油茶自交不亲和反应的研究结果，推测其花柱通道细胞分泌物成分能识别自身花粉管，进而抑制花粉管生长。这些分泌物的成分还有待进一步研究，如利用细胞化学的方法观察花粉和柱头的相互作用，利用高分辨透射电镜分析花粉壁蛋白在花柱何处结合及结合发生的时间。通过本研究对油茶花柱结构有了进一步的认识，而油茶自交花粉管在花柱中的的不亲和性反应机制、花粉管死亡特征和花粉管-雌蕊的互作机理等研究将成为今后的重要研究方向。

本研究表明：油茶为湿型柱头，柱头乳突和花柱通道细胞为分泌型细胞，花柱分为离生区(占2/3)和合生区(占1/3)两部分，花柱中基本组织细胞结构单一，壁外无分泌物。整个花柱从柱头到子房花柱道逐渐变窄，各花柱道在基部相互连通形成狭小的缝隙，具有花柱通道细胞壁外分泌物和细胞内细胞质浓度、细胞器数量与种类逐渐增加的趋势和特点。