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植物在整个生长过程中经常会遭受洪涝、干旱、低温、高温和盐渍等非生物胁迫,严重影响植物生长发育,甚至导致植株死亡[1]。盐生植物能在盐碱地上正常生长发育,利用盐生植物改良盐碱土壤具有重要意义。柽柳是一种抗逆能力非常强的木本盐生植物,能在含盐量1%的盐碱地上形成自然林,是进行耐盐机制研究和耐盐基因克隆的理想材料[2]。
在植物生长发育的整个生命过程中,Ca2+作为植物细胞信号转导途径的第二信使,几乎调控了植物所有的生理生化反应过程[3-4]。钙离子信号感受器主要分为响应型感受器和依赖型感受器,其中,植物体内的响应型感受器主要为钙离子依靠蛋白激酶CDPK,它具有蛋白激酶活性,通过与钙离子结合改变自身分子构象,实现其功能和作;然而,依赖型感受器本身却不具有酶活性,与钙离子结合后只能依靠与其他的蛋白激酶发生相互作用而实现其功能作用。在植物中这样的依赖型感受器主要有二种:一种是钙调素(CaM);另一种是植物中特有的钙调磷酸酶B类似蛋白(CBL)[4]。
据报道,CBL家族在玉米的基因组中共有10个基因,其中,ZmCBL6、ZmCBL8、ZmCBL10分布于1号染色体上,ZmCBL3、ZmCBL4、ZmCBL7分布于3号染色体上,ZmCBL2、ZmCBL5、ZmCBL9分别分布在4、6、9、10号染色体上,在2、5、7、8号染色体上未发现CBL基因的分布[5]。在谷子SiCBL基因研究中发现,SiCBL4、SiCBL6、SiCBL7分布于5号染色体[6],该家族基因在染色体上的分布是不定向、不均匀的。然而,CBL蛋白作为植物所特有的钙离子信号感受器,它的结构中含有典型的与钙离子结合的结构域(即EF手型结构)和豆蔻酰化位点[7]。豆蔻酰化是一种翻译后的修饰作用,主要发生在CBL蛋白N端的第2个氨基酸(甘氨酸残基)位点处,促进了CBL蛋白与细胞膜上离子载体的相互作用[8-9]。
以往研究证明,CBL4基因具有抗旱耐盐能力[10]。如Kudla等[11]发现,在50 mmol·L-1 NaCl处理后,转AtCBL4基因拟南芥植株的表型和根长都明显优于野生型。Liu等[12]研究发现,AtCBL4基因在拟南芥耐盐胁迫应答中发挥重要作用。在拟南芥中,AtCBL4基因通过形成AtCBL4/SOS3-ATCIPK24/SOS2-SOS1调控通路从而参与根部耐盐调控[10]。Martínez-Atienza等[13]研究发现, 水稻(Oryza.sativa L.)OsCBL4与AtCBL4具有较高的同源性,存在与拟南芥SOS途径结构类似的信号系统,同样主要参与植物根部的耐盐调控[14]。这也是目前研究最明确的一条耐盐途径,其中,CBL4基因是该调控通路的起始信号基因,承载着整个信号途径转录翻译的信号传递。因此,在盐生植物刚毛柽柳中研究CBL4基因的耐盐功能以及其进一步的调控网络具有重要意义。
本研究从刚毛柽柳(Tamarix hispida)中克隆获得ThCBL4基因,利用实时荧光定量RT-PCR分析了ThCBL4基因响应不同非生物处理(高盐、干旱、ABA信号)后的表达模式,进一步构建了ThCBL4基因过表达载体(pROKII-ThCBL4)、抑制表达载体(pFGC5941-ThCBL4),将其在刚毛柽柳中瞬时表达,分析比较过表达、抑制表达ThCBL4基因刚毛柽柳和对照刚毛柽柳(转pROKII空载体)耐盐生理指标和生理染色情况,以初步鉴定ThCBL4基因功能。该研究为进一步分析刚毛柽柳耐盐机制和利用基因工程手段提高植物耐盐能力奠定理论基础。
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植物材料的种植与胁迫处理参照Gao等方法[2],具体步骤为:将刚毛柽柳种子播种于塑料筐中,栽培基质为2:1(v/v)的泥炭土和砂子混合基质。温室中培养,温室平均温度控制在24℃,光暗周期14 h/10 h,相对湿度70%75%。2个月生刚毛柽柳幼苗分别用0.4 mol·L-1 NaCl、20%(w/v)PEG6000和100 μmol·L-1 ABA溶液进行浇灌处理,处理时间分别为6、12、24、48、72 h。同时以正常浇水刚毛柽柳材料为对照。胁迫处理后分别取刚毛柽柳根部和叶部组织。经液氮速冻后,保存于-80℃冰箱用于RNA的提取。
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以“Calcineurin B-like protein”作为关键词,对实验室前期构建的刚毛柽柳7个转录组的Unigenes BLAST比对结果进行查找,获得ThCBL4基因cDNA序列,通过ORF founder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf.htmL)程序,综合BLASTX比对结果确定其开放读码框,选择具有完整ORF的ThCBL4基因设计引物,引物序列为:ThCBL4-F:5’GCTCTAGAATGGGTTGTGGGCGGTCAAAG3’; ThCBL4-R:5’GGTACCCCGTCACTTCTGCTGTCGGACCGGACT3’。以刚毛柽柳cDNA为模板进行RT-PCR,进一步测序确定所获得的ThCBL4基因序列。对克隆获得的ThCBL4基因进行序列分析,用ProtParam(http://au.expasy.org/tools/protparam.html)软件计算推导ThCBL4基因编码蛋白质的分子量及理论等电点。在NCBI上对刚毛柽柳ThCBL4基因进行氨基酸序列同源比较,选取刚毛柽柳ThCBL4基因与拟南芥AtCBL全家族的10个CBL蛋白序列进行分析,利用Bioedit软件进行多序列比较,并利用MEGA软件邻接法Neighbor-Joining(NJ)预测系统发生树。这10个拟南芥CBL基因分别是AtCBL1(AT4G17615.1)、AtCBL2(AT5G55990)、AtCBL3(AT4G26570)、AtCBL4(AT5G24270.1)、AtCBL5(AT4G01420)、AtCBL6(AT4G16350)、AtCBL7(AT4G26560)、AtCBL8(AT1G64480)、AtCBL9(AT5G47100)和AtCBL10(AT4G33000)。
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利用CTAB法提取刚毛柽柳不同组织总RNA,经DNase Ⅰ (Promega)消化处理,去除DNA污染。分别取1 μg总RNA进行反转录,反转录反应体系和操作参照Primer ScriptTM RT Reagent Kit(Perfect Real Time) (Takara)说明。实时定量RT-PCR体系及反应程序参照Gao等方法[2]。将反转录产物稀释10倍,用作Real time RT-PCR反应模板。选择刚毛柽柳β-tubulin、α-tubulin和β-Actin基因作为内参基因。内参和ThCBL4基因的定量PCR引物见表 1。Real time RT-PCR反应体系为20 μL,其中包括模板2 μL,基因特异性上下游引物各1 μL(10 μmol·L-1)和2×Power SYBR Green PCR master mix 10 μL。反应程序为95℃预变性30 s;95℃变性15 s,58℃退火15 s,72℃延伸30 s,80℃读板1 s,45个循环;72℃延伸7 min。3次重复。反应在MJ OpticonTM2仪器(BioRad Hercules.CA. USA.)上完成。实时定量RT-PCR数据利用2-△△Ct法进行分析[15]。
基因
Gene正向引物(5’-3’)
Forward prime(5’-3’)反向引物(5’-3’)
reverse prime(5’-3’)ThCBL4 CAATTTGCCTTATTCAGGAAT CCACTATGCTCCCAACGATCT Actin AAACAATGGCTGATGCTG ACAATACCGTGCTCAATAGG α-tubulin CACCCACCGTTGTTCCAG ACCGTCGTCATCTTCACC β-tubulin GGAAGCCATAGAAAGACC CAACAAATGTGGGATGCT Table 1. The primers sequences of Real time RT-PCR
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选择生长一致的1个月大刚毛柽柳组培苗,将构建好的ThCBL4基因过表达载体EHA105(pROKⅡ-ThCBL4)、抑制表达载体EHA105(pFGC5941-ThCBL4)和空载体EHA105(pROKⅡ)(对照)分别瞬时侵染刚毛柽柳,瞬时侵染方法参照Zang等描述[16]。利用实时定量RT-PCR技术分析3种瞬时转化刚毛柽柳中ThCBL4基因的表达。比较瞬时表达刚毛柽柳在逆境胁迫前后的生理染色(DAB、NBT、Evans blue染色)和胁迫相关生理指标(POD、SOD活性和MDA含量)[16]。