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中华紫胶虫(Kerria chinensis Mahdihassan)隶属于半翅目(Hemiptera)、胶蚧科(Tachardiidae)、胶蚧属(Kerria),是一种具有重要经济价值的资源昆虫,主要寄生于交趾黄檀(Dalbergia cocrinchinensis Pierre ex Laness)、光叶合欢(Aibizia lucida (Steud.) Nielsen)等植物上,通过吸取植物韧皮部的汁液生长繁殖。紫胶是雌虫通过腺体分泌出的一种纯天然的树脂,主要成分由紫胶树脂、紫胶蜡、紫胶色酸等组成。紫胶是重要天然林产化工原料,加工后被广泛应用于军工、日用化工、电子等行业,因而具有重要的经济价值[1-2]。前人在紫胶虫研究方面已做了大量的工作,但主要是围绕紫胶虫生物学特征、生态适应性、寄主植物、遗传多样性等方面展开的,在紫胶合成的分子机理、泌胶相关基因的验证等方面的研究尚未见报道[3-6]。
紫胶树脂是由羟基脂肪酸和倍半萜烯酸酯相互形成的内酯及交酯混合而成,结构比较复杂[2]。羟基脂肪酸是紫胶树脂的主要组成部分,与之相关的脂肪酸合成代谢途径,其主要由脂肪酸合成酶(FAS)、超长链脂肪酸延伸酶(ELO)、脂肪酸去饱和酶(FAD)等参与完成,其中,脂肪酸去饱和酶(FAD)在脂肪酸代谢过程中发挥着重要作用。FAD在卷叶蛾、烟草蛾、小菜蛾等蛾类以及意大利蜜蜂、家蚕等昆虫中已有广泛的研究[7-10],研究发现,脂肪酸去饱和酶Δ6(FAD 6)是合成长链多不饱和脂肪酸(LC-PUFAs)的限速酶,在近十几年的研究中引起了广泛的关注[11],而在果蝇中对FAD研究的比较系统,其中果蝇的fad1为第一个报道的昆虫FAD[12],fad1具有Δ9功能特性,最优底物为棕榈酸,能通过激素来调控果蝇的脂质代谢[13]。在紫胶树脂中紫胶桐酸(9, 10, 16-三羟基棕榈酸)是其主要成分[2],因此,推测FAD基因在紫胶合成通路中起着重要的调控作用。
RNA干扰(RNAi)是指在真核生物中,由双链RNA(dsRNA)诱发同源mRNA降解,使靶基因表达沉默的现象[14]。RNAi转染有注射、喂食、浸泡、病毒感染和转基因等方法,较常用的是注射法和喂食法。在RNA干扰研究的初期,注射最初主要应用于线虫[14],并随着在果蝇中运用的开展[15],目前已在小菜蛾(Plutella xyllostella Linnaeus)、褐飞虱(Nilaparvata lugens Stal)、赤拟谷盗(Tribolium castaneum Herbst)等研究对象中建立了注射dsRNA诱导RNAi的体系[16-20];但当研究对象个体过小时,注射难度增大且成活率降低这一问题仍无法得到有效解决。喂食法诱导RNAi因其操作简单方便,对研究对象危害性小等特点已在马铃薯甲虫(Leptinotarsa decemlineata Say)、麦长管蚜(Sitobion avenae Fabricius)等昆虫中得到应用[21-22],但喂食法存在作用较慢、效率较低的缺点[23-24]。中华紫胶虫体型较小,幼虫在寄主植物上寻找适宜的枝条将口针刺入树皮下固定取食后将终生不动。由于注射法和喂食法各自存在缺点,在中华紫胶虫个体过小且不能喂食时,使用哪种转染方法将dsRNA转染到其体内显得至关重要。涂干法一般用于蛀干害虫的防治,具体方法为将药剂通过毛刷等工具直接涂抹于树干上。选择性的给药方法使药剂更有效的接触虫体,并避免了大量无选择性给药给环境带来的影响。这样的给药方法恰好适用于本实验寄生于树干上的紫胶虫。前人研究发现,dsRNA在体外有高稳定特性,将其喷洒在植物叶片上,几天之后仍然可以保持相对较高的稳定性[25]。鉴于上述原因,本实验拟采用虫体涂抹法将dsRNA转染到紫胶虫体内,对其FAD基因的功能进行验证。
在野外对中华紫胶虫进行RNAi实验时,dsRNA的需求量很大,所以需要选择一种可大量较低成本获得的dsRNA的方法。目前,dsRNA的制备主要方法有试剂盒法、大肠杆菌诱导法和转基因植物法等,其中,用试剂盒法实验操作简单、耗时少等特点,但其成本高且产量低,不易长时间保存,不适用野外大用量实验;转基因植物法操作周期长,而且得到目的植株概率低;利用原核表达系统制备dsRNA,有较低的成本并能够获得大量dsRNA。基于大肠杆菌诱导法的优势,其制备dsRNA的方法已在家蚕(Bombyx mori Linnaeus)、棉铃虫(Helicoverpa armigera Hubner)、线虫等物种中广泛应用[26-28]。为了能够较低成本获得dsRNA用于中华紫胶虫RNAi实验,本研究通过采用大肠杆菌诱导法构建中华紫胶虫FAD基因RNAi载体,采用菌液涂抹的方式将dsRNA转染到紫胶虫体内,检测FAD基因对紫胶泌胶量的影响,从而为在分子水平上验证紫胶合成相关基因功能提供科学依据,也为进一步研究紫胶虫泌胶机理奠定基础。
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中华紫胶虫采自中国林业科学研究院资源昆虫研究所元江试验站(102°00′46" E,23°36′11" N)。DH5α感受态细胞购买于天根生化科技(北京)有限公司,载体L4440购自Addgene公司,菌株HT115由BioVector质粒载体菌种细胞基因保藏中心提供。
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利用RNA提取试剂盒(生工生物工程(上海)股份有限公司)提取中华紫胶虫总RNA,用PrimeScriptTM RT reagent Kit试剂盒(Takara公司)反转录得到cDNA第一链。根据转录组测序得到的FAD基因片段,通过siDirect version 2.0分析FAD碱基序列,找到干扰位点较多的片段,从而尽可能的避免脱靶效应。使用Primer-Premier 6.0设计引物,并通过对引物的特异性检测等预实验筛选,最终确定一条266 bp片段作为RNA干扰片段。在合成引物的正反向引物中添加限制性内切酶(Sal I和Sac I,下划线标记)位点(表 1)。所有的引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
基因
Gene引物
Primers引物序列
Sequence of primer(5’→3’)长度
Product/bpFAD ds-f ATGAGCTCGCAATGATACAACGAACCA 266 ds-R ATGTCGACGAACGATGTGACCATAAGC RT-F CATCGTTCTTACAAGGCTAA 142 RT-R TATGTGGATCGGCATTCG β-actin RT-F ATCGTGCTGAGTGAGGAA 143 RT-R CGCTTCGCTGATTATCGTA Table 1. Primers used for dsRNA synthesis and RT-qPCR
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以制备好的cDNA为模板,使用引物对FAD基因进行扩增,反应条件为95℃,2 min预变性后,95℃,30 s变性,50℃,30 s退火,72℃,1 min延伸,共34个循环,72℃终延伸10 min后,4℃保存。获得的PCR产物用1.0%的琼脂糖凝胶进行电泳并割胶回收。
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将FAD回收的产物和L4440载体用Sac I和Sal I(NEB(北京)有限公司)进行双酶切,酶切产物通过琼脂糖凝胶电泳检测之后利用T4连接酶连接过夜。将其连接产物转化到DH5α感受态细胞后,涂布于含有氨苄青霉素的SOC固体培养基上,培养14 h左右,挑取单菌落于SOC液体培养基中培养。对其构建的FAD-L4440重组质粒做菌液PCR验证并提取质粒进一步通过测序进行验证。
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将构建好的FAD-L4440重组质粒转化到HT115感受态菌株中,涂布于含有氨苄青霉素和四环素的SOC固体培养基上,培养14 h左右,挑取单菌落转入液体培养基37℃过夜培养,然后将过夜培养液加入2×YT液体培养基中培养至OD600=0.4,加入IPTG进行诱导,继续摇床培养4 h后收集菌体。
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用无菌水稀释菌体,配制成高(620 ng·mL-1)、中(62 ng·mL-1)、低(6.2 ng·mL-1)不同浓度的测试菌液,并以不做任何处理的自然组(ck)和L4440-HT115菌液作为实验对照组。转染时期选择紫胶虫幼虫期,在幼虫期其少量泌胶,虫体表面没有紫胶包被,菌液可以直接作用于虫体表面,通过紫胶虫表面的蜡腺和气孔进入体内,每天将不同浓度的测试液和对照液涂抹在中华紫胶虫幼虫体表面,每天涂抹2次,连续处理3 d后收集12、24、48、72 h的实验样品,1个月后收集实验组和对照组的样品对其个体泌胶量进行测定。
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使用Primer-Premier 6.0设计荧光定量引物(表 1),利用RNA提取试剂盒(生工生物工程(上海)股份有限公司、上海)提取实验组和对照组的总RNA,使用PrimeScriptTM RT reagent Kit试剂盒(Takara公司)进行反转录;之后以相对定量的方法进行基因表达量检测。选择β-actin基因作为内参,并对每个样进行3次独立的生物学重复,采用2-ΔΔCT法计算相对表达量[29]。